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加入酶標(biāo)記檢測抗體的核心注意事項
更新時間:2025-12-04瀏覽:11次

    加入酶標(biāo)記檢測抗體的核心注意事項

    使用酶標(biāo)記檢測抗體(常見的是酶標(biāo)二抗)是ELISA、WesternBlot、免疫組化等實驗中的關(guān)鍵步驟。以下是需要重點關(guān)注的方面,分為實驗前、實驗中、實驗后三個階段。

    一、實驗前準(zhǔn)備:抗體選擇與保存

    特異性是關(guān)鍵

    宿主來源:確保檢測抗體(二抗)所針對的宿主物種與一抗的宿主物種匹配。例如,小鼠來源的一抗應(yīng)選擇抗小鼠的酶標(biāo)二抗。

    免疫球蛋白類型:確認(rèn)一抗的亞型(如IgG,IgM),并選擇針對該亞型的二抗,以獲得信號。

    交叉吸附:在進(jìn)行多重檢測或樣本含有多種物種蛋白時,應(yīng)選擇經(jīng)過交叉吸附的二抗,以減少非特異性結(jié)合。

    酶與底物系統(tǒng)的選擇

    HRP(辣根過氧化物酶):

    優(yōu)點:成本低、靈敏度高、底物多樣(如TMB,DAB)。

    注意事項:嚴(yán)禁使用含疊氮鈉(NaN?)的緩沖液,因為NaN?是HRP的抑制劑。同時,要避免溶液被微生物污染。某些還原劑(如DTT)也會使其失活。

    AP(堿性磷酸酶):

    優(yōu)點:穩(wěn)定性好,不受NaN?影響。

    注意事項:應(yīng)避免使用含有磷酸根離子的緩沖液(如PBS),因為磷酸根是AP的競爭性抑制劑。推薦使用Tris緩沖液。

    抗體的保存與稀釋

    正確保存:嚴(yán)格按照說明書要求保存,通常是-20℃分裝凍存,避免反復(fù)凍融。

    使用前離心:短暫離心小管,將液體收集至管底,避免損失和起泡。

    優(yōu)化稀釋比例:必須進(jìn)行預(yù)實驗來優(yōu)化二抗的稀釋比例。說明書提供的范圍是一個參考起點。濃度過高會導(dǎo)致背景深,濃度過低則信號弱。

    二、實驗過程中:孵育與洗滌

    封閉要充分

    在加入檢測抗體前,必須用惰性蛋白(如BSA、脫脂奶粉、血清等)對膜或板進(jìn)行充分封閉,以封堵非特異性結(jié)合位點,這是降低背景的關(guān)鍵。

    孵育條件優(yōu)化

    溫度與時間:室溫孵育1小時或4℃過夜。4℃過夜通常結(jié)合更牢固,背景更低,但需要更長時間。室溫孵育更快捷,但需注意控制時間和溫度,避免背景過高。

    避光:如果酶標(biāo)抗體偶聯(lián)了熒光染料,整個孵育過程需避光。

    均勻孵育:確??贵w溶液能均勻覆蓋整個樣本,放在搖床緩慢搖動孵育效果更佳。

    洗滌至關(guān)重要

    洗滌:孵育后,必須使用洗滌緩沖液(如TBST、PBST)進(jìn)行充分且嚴(yán)格的洗滌,以去除未結(jié)合的游離抗體。這是降低背景有效的一步。

    洗滌次數(shù)與體積:通常建議洗滌3-5次,每次浸泡并搖動3-5分鐘。使用足量的洗滌液。

    三、實驗后:顯色與結(jié)果分析

    底物使用與顯色

    新鮮配制:尤其是HRP的底物,建議在使用前新鮮配制,以保證其活性。

    避光反應(yīng):某些底物(如ECL)對光敏感,顯色反應(yīng)需在暗室進(jìn)行。

    控制反應(yīng)時間:顯色反應(yīng)時間不宜過長,否則會導(dǎo)致背景過高。一旦達(dá)到理想的信號強(qiáng)度,應(yīng)及時終止反應(yīng)(對于ELISA)或進(jìn)行成像(對于WB)。

    設(shè)立對照

    陰性對照:不加一抗(只加封閉液和二抗),用于評估二抗的非特異性結(jié)合背景。

    空白對照:不加一抗和二抗,用于評估底物自身的顯色情況。

    陽性對照:使用已知陽性的樣本,確保整個實驗系統(tǒng)工作正常。

    總結(jié)

    成功使用酶標(biāo)記檢測抗體是一個系統(tǒng)性的優(yōu)化過程,核心在于:

    選對(特異性)

    用好(稀釋度、孵育條件)

    洗凈(降低背景)

    控好(底物反應(yīng)與對照)

    遵循以上注意事項,將能顯著提高實驗的可靠性、靈敏度和重復(fù)性。

    注:以上僅供參考,不作為實際數(shù)據(jù),實驗需嚴(yán)格遵循說明或咨詢技術(shù)老師。

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